血液/细胞/细菌基因组DNA快速提取试剂he40110

2025-08-03

FlashPure Universal Genomic DNA Kit

血液/细胞/组织/鼠尾/细菌基因组 DNA 提取试剂he

(离心柱型)

血液/细胞/细菌基因组DNA快速提取试剂he

目录号:40110

产品内容:

自备试剂:

无水乙醇,RNaseA(可选),溶菌mei(用于革兰氏阳性菌,可选)

保存条件:

室温(15~25℃)

蛋白酶K,室温可保存6个月,4℃保存12个月,~20℃保存2年。

产品简介:

适用于从血液、培养细胞、动物组织、植物组织、鼠尾、细菌等样本中快速提取高质量的基因组DNA。

本试剂盒采用du特的裂解液,利用硅胶膜特异吸附DNA,无需酚氯仿等有毒试剂,也无需进行耗时的醇类沉淀,最大限度的去除蛋白及其他抑制性杂质,得到基因组DNA,无蛋白、核酸酶污染,可直接进行PCR、酶切和杂交等相关分子生物学实验。

具体产品的参数以收到产品说明书的参数为准产品特点:

1.简便快速:30min内可获得高纯度的基因组DNA。

2.安全无毒:无需苯fen/氯仿抽提。

3.高产:典型的产量 200µl全血可提取出 3~6µg基因组 DNA,

4.高纯:OD260/280=1.7~1.9,长度可达30~50kb,可直接进行PCR、酶切和杂交等分子生物学实验。

注意事项:

1.如果裂解液TL、结合液CB、抑制物去除液IR有沉淀析出,可在37℃水浴溶解,摇匀后使用。

2.开始实验前将需要的水浴先预热到70℃备用。

3.为了优良效果,zui hao使用新鲜血液标本或者4℃存放少于3天的标本,不要使用反复冻融超过3次的标本,否则会严重降低产量,不同样品尤其疾病样品中白细胞数量差异可能非常大,因此产量的个体差异也可能非常大。

操作步骤:

第一次使用前,请先在漂洗液WB中加入指ding量无水乙醇,详见瓶身的标签。提示:所有离心步骤必须在室温(15~25℃)下进行。

1.柱平衡:向吸附柱的膜中央(吸附柱放入收集管中)加入100μl平衡液,12,000rpm离心1min,弃滤液,将吸附柱重新放回收集管中。

(请使用当天处理过的柱子)

2.材料处理:

a.血液

取200μl新鲜、冷冻或加入各种抗凝剂的血液,放入1.5ml离心管。

▲如果全血起始量小于200μl,则用1×PBS补足到200μl。

如果起始量介于300μl~1ml之间,则需要先进行红细胞裂解操作: 在样品中加入3倍体积红细胞裂解液颠倒混匀,室温放置10min,期间再颠倒混匀几次。13,000rpm离心20sec(对于1.5ml离心管)或2,000~3,000 rpm离心5 min(对于15 ml离心管),吸去上清,留下白细胞沉淀(如果看到的是大部分的红色细胞团,则再次重复上述红细胞裂解步骤),加入200 μl 1× PBS,振荡至che底悬浮。

▲如果处理血样为禽类、鸟类、两栖类或更低级生物的抗凝血液,其红细胞为有核细胞,因此处理量仅用5~20μl,可加1×PBS补足到200μl后,进行下面的裂解步骤。

b.培养细胞

①105~106悬浮细胞到一个1.5ml离心管;对于贴壁细胞,应该先用胰蛋白mei消化后吹打下来收集。

② 13,000rpm离心10sec,吸弃上清,留下细胞团。

③ 加入200 μl 1× PBS重悬洗涤细胞,13, 000 rpm离心10 sec,wan全吸弃上清。

④ 再次加入180μl1×PBS,振荡混匀,使细胞che底悬浮。

c.动物组织、植物组织(例如鼠肝脑或者植物叶片)

将20~50mg(脾组织用量应少10mg)新鲜或者解冻的组织用

解剖dao切成小碎块(切成小块可以提高产量)或者在液氮中研磨组

织成细粉后,转入装有180μl组织裂解液TL的1.5ml离心管中,

用大口径枪头吹打混匀。

d.鼠尾

将0.2 ~ 0.5 cm的鼠尾巴尖(即20 ~ 50 mg)剪碎(一定要剪0 ~ 2cm范围内的尾巴尖,否则裂解效果不好),或者在液氮中研磨成细粉后,转入装有180μl裂解液TL的1.5ml离心管中,用大口径枪头吹打混匀。

e.细菌

① 取 0.5~2ml培养菌液(最多不超过2×109个细胞),10,000rpm,

离心30sec,尽可能的吸弃上清,收集菌体。

▲起始处理量可以根据细菌密度、细胞种类、预期产量进行调整,但是离心吸附柱最大吸附能力是30 μg 基因组 DNA,如果菌体过量超过最大吸附能力,反而会严重降低产量。

② 加入200μl1×PBS重悬,10,000rpm离心30sec,吸弃上清。

将细胞振荡或者吹打充分重悬于180μl1×PBS中。

▲注意:对于较难破壁的革兰氏阳性菌,可略过b步骤,加入溶菌mei进行破壁处理,具体方法为:加入180 μl缓冲液(20 mM Tris, pH 8.0;2mMNa2-EDTA;1.2%TritonX~100;临用前加入终浓度为 20mg/ml 的溶菌mei(溶菌mei必须用溶菌mei干粉溶解在缓冲液中进行配制,否则会导致溶菌mei无活性)),37℃处理 30 min 以上。

3.加入20μl蛋白酶K溶液,充分混匀。

a.提取血液基因组时,只需加入ProteinaseK混匀,即可进行下一步。

b.提取细胞基因组时,只需加入ProteinaseK混匀,即可进行下一步。

c.提取动物组织、植物组织的基因组时,加入ProteinaseK混匀后,在56℃放置 1~3小时,每小时颠倒混合样品2~3次,直至组织wan全消化溶解,再进行下一步。

d.提取鼠尾基因组时,加入ProteinaseK混匀后,在56℃放置 3小时(也可以过夜消化),每小时颠倒混合样品2~3 次,直至组织wan全消化溶解,再进行下一步。

e.提取细菌基因组时,只需加入ProteinaseK混匀,即可进行下一步。

4.(可选步骤)加入5 μl RNase A (100mg/ml) 溶液,振荡混匀,室温放置 5~10min。

5.加入200μl结合液CB,充分振荡混匀,70℃水浴或金属浴处理10min。

6.冷却后加100 μl 无水乙醇 (或异丙醇),充分振荡混匀,此时可能会出现絮状沉淀,短暂离心以去除管盖内壁水珠。

7.将所得溶液和絮状沉淀加入一个DNA吸附柱中,(吸附柱放入收集管中)13,000rpm离心1min,DNA被吸附在膜上,倒弃滤液。

8.加入500μl抑制物去除液IR,13,000rpm离心30sec,倒弃滤液。

9.加入600μl漂洗液WB(请检查是否已加入无水乙醇),13,000rpm离心30sec,倒弃滤液。

10.重复步骤9一遍。

11.将DNA吸附柱放回空收集管中,13, 000 rpm离心2 min,尽量除去漂洗液,以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。

12.取出DNA吸附柱,放入一个干净的1.5ml 离心管中,向吸附膜的中央加入100 μl洗脱缓冲液EB(洗脱缓冲液事先在80 ~ 100℃水浴中预热可以提高产量),室温放置3 ~5 min,13, 000rpm离心1min。

▲可将第一次洗脱所得溶液重新加入离心柱中,室温放置2min,13,000rpm离心1min。可以提高浓度10%左右。

13.DNA 可以存放在~20℃,如果要长时间存放,可以放置在~70℃。

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