对于大部分abcam抗体，比较合适的保存方式是分装后保存在 -20℃ or-80℃ 。对绝大多数抗体来说，保存在-20℃是*足够了。没有任何证据显示保存在-80℃会有更多的好处!

　　分装可以zui大程度的降低反复冻融对抗体活性的损害，同时也降低了由于多次从同一管中吸取抗体造成的污染可能性。分装的量以一次实验用完为好，zui少不能少于10ul每份。因为分装体积越小，抗体的浓度越可能会受到蒸发以及管壁吸附的影响。

　　复融后的分装抗体如果一次用不完，将剩余母液保存在4℃，避免再冻起来!抗体工作液应该当天配制当天用完，在4℃ 尽量不要超过1天。避免将abcam抗体保存在自动除霜冰箱中。尽量将抗体保存在冰箱里层，而不是门上。

　　关于abcam抗体加入一些试剂或其他溶剂的介绍。

　　关于加入甘油保存：

　　有些人会加50%的甘油到abcam抗体中来避免反复冻融，甘油在-20℃会降低冰点。这对很多抗体可能是可行的。但是abcam仅对非常小的一部分抗体检测过其在这种条件下的稳定性;而Abcam只对按照推荐条件保存的抗体提供质量保证!加入甘油的溶液不建议在-80℃保存，因为这已经超过了甘油的冰点。如果您要加入甘油来保存抗体的话，请谨慎注意无菌操作，避免污染!

　　关于蛋白保护剂：

　　蛋白在高浓度时更不容易降解(1mg/ml或者更高)，这就是为什么在abcam抗体中加入BSA之类作为稳定剂的原因了;另一方面，加入的蛋白也可以减少抗体由于管壁吸附所造成的损失。但是如果抗体要用来标记的话，则不能加入蛋白稳定剂，因为这些稳定剂会和抗体一起竞争结合标记物。

　　关于*(sodiumazide)的使用：

　　为了防止微生物污染，*经常被加入到抗体中(终浓度0.02%(w/v))。很多abcam抗体已经含有了0.02%-0.05%的*，在说明书的“Storage buffer”中有标明的。

　　在下述情况中不能使用*：

　　如果抗体用于染色或处理活细胞，用于体内研究。*在抵抗微生物的同时，对其它大部分有机物也是有毒的，因为它阻断了线粒体的cytochromeelectron transport system。

　　要偶联带有氨基基团的抗体：*会干扰任何含有氨基基团的偶联，因此在进行偶联之前，应将*去除。偶联后的抗体可以加入*保存，但是浓度只能是0.01%。对于需要偶联的抗体，thimerosal(merthiolate)可以替代*作为保护剂!

　　注意：*的去除方式，可以通过凝胶电泳或过滤的方式去除!IgG的分子量是150kDa(IgM 是~ 600kDa); *的分子量只有65Da。使用cut off 14kDa的滤膜即可将*从抗体中去除。

　　abcam抗体如何保存是有讲究的，希望以上内容可以给大家一些参考。