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供应TdB品牌DSS –小鼠结肠炎造模

硫酸葡聚糖钠盐（DSS)结肠炎造模经常遇到，但确切机制不是很清楚，一般认为肠上皮单层细胞受DSS损伤后，免疫系统受到肠道微生物其代谢物不断刺激，产生炎症。在此简单介绍一下造模步骤（小鼠）。

1. 选择8-10周龄的实验小鼠，称重（理想重量 在20g左右），打孔标记。将DSS充分溶解在高温灭菌水中，浓度按实验需求配制。2. 如果是损伤/治疗恢复造模，可将 DSS 配制为2%，如果是急性结肠炎造模，可以选择3%。喂饲量为 100ml/笼（4-5只小鼠），无论有无剩余，每隔2天必须换新配的DSS。3. 损伤/恢复造模一般是连续喂饲2%DSS 7天，然后再换为清水饲养7天。实验人员也可以根据自己的实验内容进行调整(如不涉及到恢复，可以7天后就处理小鼠，如需要观察长期炎症可以多喂养几天）急性结肠炎造模，小鼠可能坚持不到7

天。无论哪种造模，实验人员应从第一天起，记录小鼠的体重、粪便出血情况、外观、行为等。

4. 小鼠的体重一般是从饲养DSS第6天开始下降，恢复喂养清水3天左右体重开始增加。当然这不是绝对的，小鼠的基因型，饲养条件也会影响。在处理小鼠前，千万不要违背实验动物伦理规定，如体重过低，便血非常严重等，要不然文章中不好交待。小鼠处理后，测量记录结肠尺寸（会变短，膨胀），一部分储存到液氮中用于后续的基因分析，一部份保存在福尔马林中用于组织学分析。DSS 可以选瑞典TDBcons的产品，Mw: 35-55KDa◆硫酸葡聚糖>DSS>诱导肠炎模式动物的优点———————————————————————————————————————————————-溃疡性结肠炎(UC)是一种病因和发病机制尚不十分清楚的慢性肠道炎症性疾病，建立适当的结肠炎动物模型对于研究UC的病因、发病机制以及新的治疗方法具有重要意义。人们制作了多种动物模型对其进行研究，日本学者于1985年首次应用硫酸葡聚糖制备了鼠UC模型，此后，该方法广泛用于筛选治疗炎症性肠病(IBD)的新方法和临床前新药物的开发，也用于研究IBD的发病机制。其具备以下优点：◆参考方法—————————————————————————————————————————————–方法一：小鼠给予含50g/L硫酸葡聚糖(葡聚糖硫酸钠)5000或40000的蒸馏水自由饮用7d，出现体重减轻、腹泻、血便等急性肠炎的表现.病理学切片HE染色发现小鼠病变结肠腺体结构紊乱，黏膜和黏膜下单核细胞和多核细胞浸润.DSS组病变肠段组织GSH表达较对照组明显减少(2±0.6 vs 3.14±1.0，t = 3.95, P = 0.01<0.05)，病变结肠分泌的IL-4明显升高(38.7±4.7 vs 28.7±6.7，t = 3.16, P = 0.009<0.01)，IFN-g轻度降低(P>0.05).资料来源：《GSH在DSS诱导的小鼠实验性肠炎中的作用》方法二：将分子量为50 00或40000的DSS溶于饮用水，配成3% DSS溶液，让BALB/C小鼠自由饮用7d，建立小鼠急性结肠炎模型;②让BALB/C小鼠自由饮用3% DSS溶液7d，然后饮用不含DSS蒸馏水14d，建立小鼠慢性结肠炎模型；模型建立成功的标志为饮用3% DSS 7 d后出现半稀便、腹泻、大便隐血(+)和肉眼血便中的任一症状。资料来源：《葡聚糖硫酸钠致小鼠结肠炎模型的建立与评价》。已有研究表明，不同分子量的DSS所诱导的病变特征不同，如用5000, 40,000和500,000的DSS喂养小鼠，结果典型病变只出现于5,000组和40,000组，50,000组的病变主要见于盲肠和上段结肠，此外，DSS结肠炎的严重度并不依赖于DSS摄入量，而是由DSS浓度决定，小鼠饮用的DSS量差别较小时不影响诱导出的结肠炎严重度。再次，不同种属对于不同分子量的DSS的敏感度不一。